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多肽結合試劑盒(II)

多肽結合試劑盒

多肽結合試劑盒(II

貨號

產品名稱

產品規格


FG110

BcMag ? 多肽結合緩沖液試劑盒(II

一個


組件

存儲

 

2.5μm切割碘代乙酰基活化磁珠

-20

150mg

10*合緩沖器

4

10ml

封閉緩沖液(L-半胱氨酸?HCl

4

100mg

5 x清洗緩沖液

4

15ml

TCEP

-20

125mg

 

 

 

 

 

運輸條件:室溫運輸

儲存:根據上表要求在收到試劑盒時儲存各成分

 

通過氨基以外的官能團固定親和配體對實驗也是非常有幫助的。特別是使用硫醇基團,非常適用于引導特定蛋白質分子上結合位點或活性中心距離較遠的偶聯過程。使用獨特的活性基團進行定點固定有利于正確定位,例如多肽中單個末端半胱氨酸上的巰基用于小抗原結合。

 

BcMag ? 多肽合試劑盒旨在通過巰基(-SH)快速,高效和共價固定小分子多肽,用于親和純化操作BcMag ?可切割的碘乙酰基活化磁珠被建議用于與小分子多肽結合,因為長臂親水接頭可以減少空間位阻。由于活的碘代乙酰基通過內置的可裂解二硫鍵與充值連接(圖1),使用還原劑(如DTTβ-巰基乙醇)可以裂解并將目標分子-配體復合物與磁珠分離,親和純化完成后只有一個巰基附著在配體上。

 

 

 

 

 

BcMag ? 分離式碘代乙酰基活化磁珠(圖2)是均勻的二氧化硅基質的超順磁珠,表面連接有高密度的碘乙酰基或可裂解的碘乙酰基官能團。在堿性生理環境(pH 7.2--9)下,在含有20-30%DMSODMF的水性或有機溶劑中,碘代乙酰基活化的載體與巰基反應,產生穩定的硫醚鍵。這些反應通常在黑暗環境下進行,以防止游離碘的形成,因為游離碘可與酪氨酸,組氨酸和色氨酸殘基反應。

 

 

 

 

 

工作流程

碘代乙酰基磁珠作為固體載體可以完美地用于各種親和純化,將分子,細胞和部分細胞進行純化。只需要與配體結合后,將磁珠添加到含有目標分子的溶液中,然后混合,孵育,清洗和洗脫目標分子(圖3

 

 

 

 

 

功能和優點。

· 碘代乙酰基可與巰基(-SH)選擇性反應產生不可逆的硫醚鍵。

· 快速---2小時內快速結合多肽樣品。

· 適用于多種結合條件----根據偶聯反應期間蛋白質或多肽溶解度的需要,在pH 7.59.0范圍內,適用于水性緩沖液、有機溶劑(例如,20%DMSO)或變性劑(鹽酸胍)中使用。

· 樣品制備、固定和親和純化的操作方法非常簡單

· 結合----- 磁珠結合量可達到15-20μg抗體/mg磁珠

應用領域

· 用半胱氨酸殘基末端固定多肽以純化針對肽免疫原產生的抗體。

· 使用鉸鏈區的巰基以定向方式固定抗體,以確保在進行抗原親和純化時抗原結合位點不會受到空間抑制。

· 生成可重復使用的免疫親和矩陣

· 維持抗體功能通過Fc區固定IgG,使兩個抗原結合位點均可用于靶標捕獲。

 

使用協議

注意:

§ 該協議可以根據需要擴大規模。我們強烈建議使用滴定法優化每個實驗中使用的磁珠數量。.

所需材料

§ 結合緩沖

1. 可溶性聯緩沖液:50 mM Tris5 mM EDTA-NapH 8.5

2. 不可溶性聯緩沖液:50 mM Tris5 mM EDTA-NapH 8.520-30%DMSODMF6 M?HCl

§ 清洗緩沖液: 1 M的氯化鈉(NaCl)溶在蒸餾水中

§ L-半胱氨酸?HCl

§ TCEP(2-羰基乙基)磷酸鹽

§ 磷酸鹽緩沖PBS

§ BcMagTM碘代乙酰基活化磁珠:用戶可以根據要求選擇不同的碘乙酰基活化磁珠:1μm BcMag? 長臂碘乙酰基活化磁珠,2.5μm 長臂碘乙酰基活化磁珠,5μm  BcMag? 長臂碘乙酰基激活,1μm BcMag? 分離式碘乙酰基活化磁珠,或2.5μm BcMag? 分離式碘乙酰基活化磁珠。

§ 

根據樣本量,用戶可以選擇以下磁架之一:

1. BcMag? separator-2可以容納兩個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-01);

2.  BcMag? separator-6可以容納六個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-02);

3. BcMag? separator-24可以容納24個單獨的1.5-2.0 ml離心管(Cat.# MS-03);

4. BcMag? separator-50可以容納一個單獨的50 ml離心管,一個15ml的離心管,以及四個1.5ml離心管(Cat.# MS-04);

5. BcMag? separator-96可配套使用 96ELISA板或者96PCR(Cat.# MS-05).

A.樣品準備

提示:

確保要結合的蛋白質/肽含有游離(還原)巰基。為了確保還原巰基可用,必須用還原劑還原二硫鍵,如DTT(二硫蘇糖醇)、TCEP(三(2-羧乙基)膦)或2-MEA2-巰基乙胺?HCl),然后脫鹽或透析以去除還原劑。

如果重組后立即使用,新合成的肽可直接用于偶聯

對于蛋白質,在室溫下用5-10 mM TCEP溶液處理蛋白質30分鐘,然后進行透析或脫鹽柱。對于IgG抗體,推薦使用2-MEA,因為它可以選擇性地減少鉸鏈區的二硫鍵。

如果樣品含有含有游離巰基的還原劑(如2-巰基乙醇、DTTTCEP),則必須通過透析或脫鹽將這些還原劑完全去除。

1. 如果為可溶性蛋白,將1-10mg蛋白質/肽溶解在1mlsoluble coupling buffer中。如果不溶,則溶解在1mlInsoluble coupling buffer中。

2. 如果樣品已經懸浮在其他緩沖液中,則用等量的結合緩沖液稀釋樣品。

B、 磁珠制備

1.  100%丙酮(30 mg/ml)制備3%磁珠。

提示:將未使用的磁珠儲存在4℃的丙酮溶液中。可穩定保存一年。

 2.  100μl3mg)磁珠轉移到離心管中。

3.   將試管放在磁架上1-3分鐘。在試管保持留在磁力架上的同時去除上清液。從磁力架上取下試管,并通過渦旋將子用1ml結聯緩沖液重懸30秒。

4.  重復步驟3兩次。

5.除去上清液,清洗后的磁珠已可以用于偶聯反應。

注意:使用偶聯緩沖液再水化后,由于官能團的穩定性,請盡快使用磁珠

C. 結合反應

1. 清洗過的磁珠中加入100μl配體溶液,充分混合,并將樣品在室溫下于黑暗中孵育過夜,并充分混合。

2. 1ml結合緩沖液清洗磁珠四次。

3. 阻斷磁珠上多余的活性基團,通過將磁珠懸浮在含有8mg L-Cysteine?HCl1ml Coupling buffer中,并在室溫下緩慢旋轉培養30-60分鐘。

4. 1ml清洗緩沖液洗滌磁珠四次。

5. 磁珠重懸于含有0.05%疊氮化鈉的PBS緩沖液中,并將其保存在4℃

D常見親和純化過程

提示:

l 該方案是一個通用的親和純化發法。因為沒有兩種蛋白質是完全相同的,所以不可能為所有的蛋白質純化設計一個通用的協議。為了獲得最佳結果,每個用戶必須確定純化單個目標蛋白的最佳工作條件。

l 避免在binding buffers  washing buffers中使用還原劑。

l 強烈建議根據粗樣品中目標蛋白質的含量,進行滴定,以優化每個單獨實驗中使用的磁珠數量。使用過多的磁珠  

將導致較高的背景,而使用過少的磁珠將導致較低的產量。每毫克磁珠通常可與1-20μg靶蛋白結合。

1.將適量的珠子轉移到離心管中。將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時,去除上清液。

2. 取下試管,加入5倍磁珠溶液體積的PBS緩沖液,通過震蕩重新懸浮磁珠,渦旋30

秒。將試管至于室溫環境1-3分鐘,再將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時,去除上清液。

3.重復步驟2 兩次。

4. 向含有目標蛋白質的粗樣品中添加洗滌過的磁珠,并在室溫或所需溫度下溫浴1-2小時(溫度越低,培養時間越長)。

提示:強烈建議進行滴定實驗以優化培養時間。因為孵化的時間太長可能會導致很高的背景。

5. 5倍磁珠體積的PBS緩沖液或1M NaCl徹底清洗磁珠,直到280nm處洗脫液的吸光度接近背景水平(OD 280<0.05)。

              提示:添加更高濃度的鹽、非離子洗滌劑和還原劑也可能會降低非特異性背景。例如,向洗滌緩沖液中添加NaCl(濃度為1-1.5 M)、0.1-0.5%的非離子洗滌劑,如Triton X-100Tween-20,以及還原劑,如DTTTCEP(我們通常使用3mM)。

6. 通過適當的方法,如低pH2-4)、高pH10-12)、高鹽、高溫、親和洗脫或SDS-PAGE加載緩沖液中煮沸,洗脫目標蛋白。

7.切斷二硫鍵

提升:由于配體之間的構象不同,用戶應確定最佳工作條件,如還原劑、pH值和溫度,以切割單個配體的二硫鍵。以下是從磁珠上切割共軛的GFP蛋白的示例。

1)140 mMβ-巰基乙醇或5 mM DTT(二硫蘇糖醇)中孵育磁珠(30mg/ml)。

a. 在 100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 140 mM β-巰基乙醇條件下,室溫2小時或

者過夜孵育,或者在98℃條件下5分鐘。

b. 在100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 5mM DTT條件下,室溫2小時或者過夜孵

育,或者在98℃條件下5分鐘。

 

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