產品中心
PRODUCT CENTER
可分離式甲苯磺酰基磁珠
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貨號 |
產品名稱 |
產品規格 |
價格（美元） |
訂單 |
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IR101 |
1μm BcMag?可分離式甲苯磺酰基磁珠 |
150 mg |
375 |
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IR102 |
1μm BcMag?可分離式甲苯磺酰基磁珠 |
300 mg |
650 |
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IR103 |
2.5μm BcMag?可分離式甲苯磺酰基磁珠 |
150 mg |
375 |
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IR104 |
2.5μm BcMag?可分離式甲苯磺酰基磁珠 |
300 mg |
650 |
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如需大量訂購，請聯系我們報價！ |
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產品屬性 |
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組成 |
表面連接有高密度可分離式甲苯磺酰基的磁珠 |
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磁珠數量 |
約1.68 x 109磁珠/毫克（1um磁珠） 約5 x 107磁珠/毫克（5um磁珠） |
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穩定性 |
短期（<1小時）：pH 3-11；長期：pH 4-10 溫度：4°C-140°C；大多數有機溶劑 |
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磁力大小 |
40-45 EMU/g |
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磁化類型 |
超順磁性 |
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狀態 |
凍干粉 |
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官能團密度 |
1μm磁珠 |
約245μmole/g磁珠 |
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2.5μm磁珠 |
約230μmole/g磁珠 |
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存儲 |
收到后儲存在-20℃ |
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BcMagTM可分離式甲苯磺酰基活化磁珠是表面覆蓋有高密度甲苯磺酰基官能團的二氧化硅基質的磁珠。甲苯磺酰基活化磁珠可以在不引入任何電荷的情況下，在水或有機溶劑（30%DMF）中有效地共價結合含有伯胺基的配體。因為活性醛基基團通過內置的可切割二硫鍵連接物（圖1）與磁珠連接，因此，可用還原劑（如DTT或β-巰基乙醇）從磁珠上切割并分離出目標分子-配體的復合物。可分離式甲苯磺酰基磁珠是結合大分子蛋白和多肽的理想選擇。
甲苯磺酰基活化磁珠是將抗體，多肽，完整蛋白質和功能酶共價連接到磁珠表面的理想選擇。固定化的磁珠由于其低背景和抗體與磁珠表面的共價結合，而廣泛用于蛋白質和蛋白質復合物的免疫沉淀。
甲苯磺酰基活化磁珠偶聯反應在37℃下進行，pH范圍在偏堿性環境。我們建議在pH 8.5-9.5下偶聯，但與高pH不穩定配體的偶聯可以在pH 7.4的替代緩沖液中進行。
產品獨特的干燥狀態避免了丙酮溶劑儲存的麻煩，或液體去除和處理的需要。此外，由于干基質在膨脹時濃縮樣品，減少了起始材料的體積，并且會提高配體固定化的效率，因此它非常適合與濃度較低樣品進行偶聯反應。
工作流程
本磁珠作為固體載體可以完美地用于各種親和純化，將分子，細胞和部分細胞進行純化。只需要與配體結合后，將磁珠添加到含有目標分子的溶液中，然后混合，孵育，清洗和洗脫目標分子（圖2）
特點和優勢：
l 預活化，即用型磁珠
l 含有一個可切割的內置二硫鍵，可將配體-目標分子復合物從磁珠中分離出來。
l 便于使用
l 結和后表面不會帶電荷
l 穩定的共價鍵，低水平的配體泄漏
l 可重復使用的免疫親和基質
l 極低的非特異性結合率
l 可固定1-10mg蛋白或0.1-1mg多肽/ml的磁珠
l 用途：用于純化抗體，蛋白質/肽，DNA / RNA;細胞篩選、免疫沉淀
操作過程
提示：
l 強烈建議在實驗過程中進行滴定優化，以確定每個實驗中應用的磁珠數量。該協議可以相應地放大和縮小。
l 避免使用含有還原劑、tris或其他含有伯胺或其他親核類試劑的緩沖液，因為它們會破壞二硫鍵連接物或與預期的偶聯反應競爭。但wash buffers和 storage buffers 可含有氨基或羧基成分。
所需耗材
1.磁力分離器（適用于手動操作）：根據實驗時生物樣品的體積，使用者可以選擇一下不同型號的磁力分離器：
BcMag? separator-2可以容納兩個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-01);
BcMag? separator-6可以容納六個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-02);
BcMag? separator-24可以容納24個單獨的1.5-2.0 ml離心管(Cat.# MS-03);
BcMag? separator-50可以容納一個單獨的50 ml離心管，一個15ml的離心管，以及四個1.5ml離心管(Cat.# MS-04);
BcMag? separator-96 可以配合96 ELISA板使用 (Cat.#MS-05).
2.Coupling Buffer: 0.1 M磷酸鈉緩沖液，pH 7.4
提示：
l coupling buffers應具有最小的離子強度，且不應含有任何具有氨基（如Tris）的成分。但wash buffers 或者storage buffers可含有氨基或羧基。
l 水不溶性配體可以在含有30%有機溶劑（30%DMF）的coupling buffers中結合。
3. Blocking Buffer: PBS pH 7.4 含有 0.5% (w/v) BSA
4. Washing buffer: PBS pH 7.4含有 0.1% (w/v) BSA
A.磁珠的準備
1.用100%異丙醇制備3%的磁珠（30 mg/ml），并充分混合。
提示：將未使用的磁珠可以在異丙醇溶液中，儲存在4℃。可保存一年時間。
2.將100μl（3mg）的磁珠轉移到離心管中。
3. 將試管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。從磁力分離器上取下試管，加入1ml的coupling buffer用通過渦旋30秒重新懸浮磁珠。
4.重復步驟3 兩次。
5.去除上清液，將清洗的磁珠準備進行耦合反應。
注：使用coupling buffer重新水化后，由于官能團的穩定性，應盡快使用磁珠。
B.蛋白質結合
1.用coupling buffer制備100μl蛋白質溶液（0.5-1mg/ml）或多肽溶液（200μmol/ml）。
提示：偶合效率因配體而異。用戶可應根據經驗優化配體的濃度。
2. 將蛋白質或者多肽溶液與上述清洗過的磁珠混合，通過渦旋或者吹吸的方式。
3. 孵育反應，在20-25℃溫度下偶合至少需要24-48小時。在4℃下耦合時，培養時間
應至少延長至48-72小時。
4. 用1ml的washing buffer將磁珠洗滌3次。
5. 向磁珠中添加1ml的blocking buffer，并在室溫下孵育1小時或4℃過夜。
6. 用1 ml的PBS洗滌磁珠4-6次。
7. 用含有0.1%疊氮化物（w/v）的PBS緩沖液重新懸浮磁珠至所需濃度，在
4°C下儲存，直至使用。不要冷凍保存。
C．常見親和純化過程
提示：
l 該方案是一個通用的親和純化發法。因為沒有兩種蛋白質是完全相同的，所以不可能為所有的蛋白質純化設計一個通用的協議。為了獲得最佳結果，每個用戶必須確定純化單個目標蛋白的最佳工作條件。
l 避免在binding buffers 和 washing buffers中使用還原劑。
l 強烈建議根據粗樣品中目標蛋白質的含量，進行滴定，以優化每個單獨實驗
中使用的磁珠數量。使用過多的磁珠將導致較高的背景，而使用過少的磁珠將導致較低的產量。每毫克磁珠通常可與1-20μg靶蛋白結合。
1.將適量的珠子轉移到離心管中。將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。
2. 取下試管，加入5倍磁珠溶液體積的PBS緩沖液，通過震蕩重新懸浮磁珠，渦旋30
秒。將試管至于室溫環境1-3分鐘，再將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全
沉淀時，去除上清液。
3.重復步驟2 兩次。
4. 向含有目標蛋白質的粗樣品中添加洗滌過的磁珠，并在室溫或所需溫度下溫浴1-2小
時（溫度越低，培養時間越長）。
提示：強烈建議進行滴定實驗以優化培養時間。因為孵化的時間太長可能會導致很高的背景。
5. 用5倍磁珠體積的PBS緩沖液或1M NaCl徹底清洗磁珠，直到280nm處洗脫液的吸光度接近背景水平（OD 280<0.05）。
提示：添加更高濃度的鹽、非離子洗滌劑和還原劑也可能會降低非特異性背景。例如，向洗滌緩沖液中添加NaCl（濃度為1-1.5 M）、0.1-0.5%的非離子洗滌劑，如Triton X-100或Tween-20，以及還原劑，如DTT或TCEP（我們通常使用3mM）。
6. 通過適當的方法，如低pH（2-4）、高pH（10-12）、高鹽、高溫、親和洗脫或SDS-PAGE加載緩沖液中煮沸，洗脫目標蛋白。
7.切斷二硫鍵
提升：由于配體之間的構象不同，用戶應確定最佳工作條件，如還原劑、pH值和溫度，以切割單個配體的二硫鍵。以下是從磁珠上切割共軛的GFP蛋白的示例。
1）在140 mMβ-巰基乙醇或5 mM DTT（二硫蘇糖醇）中孵育磁珠（30mg/ml）。
a. 在 100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 140 mM β-巰基乙醇條件下，室溫2小時或
者過夜孵育，或者在98℃條件下5分鐘。
b. 在100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 5mM DTT條件下，室溫2小時或者過夜孵
育，或者在98℃條件下5分鐘。
